Gewinnung von Untersuchungsmaterial

Das Material sollte möglichst vor Beginn einer antibiotischen Behandlung gewonnen werden, optimalerweise bei Krankheitsbeginn oder im akuten Stadium. Material unter sterilen Bedingungen von der Körperregion entnehmen, an der der vermutete Erreger am ehesten zu erwarten ist.

Bitte stets fest verschließbare und sterile Transportgefäße verwenden, damit das Risiko sekundärer Verunreinigungen ausgeschlossen sowie die Infektionsgefahr für das Laborpersonal minimiert wird (gemäß Gefahrgutverordnung Klasse 6.2.).

Transportzeiten und Zeiten der Zwischenlagerung sollten so kurz wie möglich gehalten werden.

Bei laufender Chemotherapie wird um Mitteilung der eingesetzten Pharmaka inkl. Dosierung gebeten. Die Probe sollte dann unmittelbar vor der nächsten Antibiotikagabe entnommen werden.

Für die klinisch-mikrobiologische Bewertung der Untersuchungsbefunde sind nähere Angaben zum Patienten oft entscheidend.

Neben Name und Geburtsdatum des Patienten sind dies:

	Klinische Verdachtsdiagnose, insbesondere bei speziellen Fragestellungen (z. B. Brucellose, Diphtherie, Endokarditis, Cholera)
	Art und Herkunft des Materials
	Aktuelle antibiotische Behandlung
	Auslandsaufenthalte (wenn relevant)
	Entnahmedatum und -zeitpunkt

Bitte Röhrchen und Begleitschein sorgfältig beschriften!

Blutkulturen

Indikationen:

1. Unklares Fieber

2. Verdacht auf:
    - Sepsis
    - Meningitis
    - Pneumonie
    - Endokarditis
    - Osteomyelitis
    - Pyelonephritis
    - Pyogene Arthritis u. v. a.

Abnahme:

	Füllmenge: 8 - 10 ml pro Flasche (Spezialflaschen für Kinder: 1 - 5 ml)
	vor Beginn der Antibiotikatherapie (unter laufender Chemotherapie unmittelbar vor der Applikation)
	nach gründlicher Hautdesinfektion
	zu Beginn des Fieberanstiegs
	nicht aus Venenkathetern
	aerobe und anaerobe Blutkulturflaschen beimpfen

Der Transport ins Labor sollte möglichst sofort erfolgen.

Die wiederholte Abnahme mehrerer Blutkulturen erhöht die Wahrscheinlichkeit eines positiven Keimnachweises erheblich.

Wichtig: Bei den modernen Blutkultursystemen (z. B. BacTec© oder BacTAlert©) entfällt die früher übliche Belüftung der aeroben Flaschen. Die Flaschen sollten bis zum Transport bei Raumtemperatur gelagert werden (KEINE Vorbebrütung!). Transport ebenfalls bei Raumtemperatur.

Tabelle 1: Empfehlungen zu Häufigkeit und Zeitpunkt von Blutentnahmen bei Sepsis (DGHM-Verfahrensrichtlinien)

Liquor und Punktate aus sonst sterilen Körperhöhlen

Punktat in ein steriles Röhrchen überführen, umgehenden Transport ins Labor gewährleisten. Steht die Möglichkeit eines ad hoc-Transports nicht zur Verfügung, sollte ein Teil des Materials zusätzlich in Blutkulturflaschen inokuliert werden (aerobe und anaerobe Flasche).

Rachen-, Tonsillen- und Nasenabstriche

Abstrich möglichst am Morgen vor Nahrungsaufnahme. Zunge mit Spatel herunterdrücken, Material gezielt unter Sicht durch Drehen des Tupfers entnehmen, Zunge nicht berühren. Abstrich in Transportmedium überführen.

Sputum

Morgensputum verwenden. Vor dem Abhusten Mund gründlich mit Wasser ausspülen (Reduktion der Begleitflora), jedoch nicht desinfizieren. Bei Untersuchung auf TBC abgekochtes Wasser oder Tee zum Spülen verwenden.

Zur Sputumgewinnung ggf. Provokationsversuch durch Inhalation eines 45°C warmen, hypertonen Aerosols (z. B. einer 10%igen NaCl-Lösung in 15%igem Propylenglykol). Sputum, das nicht innerhalb von 2-3 h untersucht werden kann, ist sofort nach der Entnahme auf 4°C zu kühlen. Material in steriles Röhrchen überführen. Für die Untersuchung auf Mykobakterien Proben an drei aufeinanderfolgenden Tagen entnehmen.

Material aus dem unteren Respirationstrakt

Bronchiallavage, Bronchialsekret, tracheales Aspirationsmaterial, Trachealsekret. Proben kühl halten (4°C), Transport innerhalb 24 h zum Labor.

Abstrich vom Auge

Konjunktiva nach Abheben des Augenlids mit Tupfer abstreichen, Tupfer in Transportmedium überführen. Materialentnahme auch vom nicht infizierten Auge empfehlenswert. Die Nachweisrate kann erhöht werden, indem der Tupfer direkt auf eine vorgewärmte Schokoplatte ausgestrichen wird. Nähere Informationen hierzu erhalten Sie in unserer Mikrobiologieabteilung. Konjunktivalsekret mit Spritze oder Pasteurpipette entnehmen, in sterilem Röhrchen versenden.
Cornealabstrich von Randbezirken und Zentrum eines Ulcus entnehmen.

Eiter und Wundabstriche

Krusten und oberflächliches Sekret entfernen, Material aus der Tiefe der Wunde nahe zum gesunden Gewebe entnehmen und in Amies-Transportmedium überführen. Eiterpunktate und flüssiges Material aus tiefen Wunden in sterilem Röhrchen transportieren. Lagerung bis zum Transport bei Raumtemperatur.

Für mykologische Untersuchungen (Dermatophyten) Krusten, Haare, Hautgeschabsel, Nagelstückchen, Schuppen und  Gewebe in sterilem Röhrchen einsenden. Abstriche sind für die Dermatophyten-Diagnostik nicht geeignet.

Urin

Mittelstrahlurin: Am besten Morgenurin, Abstand zur letzten Miktion mindestens 3 h. Genitalien sorgfältig mit Wasser und Seife reinigen, keine Desinfektionsmittel verwenden. Nach Reinigung zur Probenentnahme Vorhaut zurückstreifen bzw. Labien gespreizt halten, erste Urinportion ablaufen lassen und ohne Unterbrechung des Harnstrahls 5-10 ml in Uristat®-Röhrchen oder sterilem Gefäß auffangen. Uristat®-Röhrchen werden von uns auf Anfrage kostenlos zur Verfügung gestellt.

Katheterurin: Nur in Ausnahmefällen indiziert (alte Patienten, Querschnittslähmung, etc.), Gefahr der Keimverschleppung in die Blase.

Suprapubisches Blasenpunktat (Optimales Untersuchungsmaterial für die Diagnostik der Harnwegsinfektion, da jede Keimzahl als diagnostisch signifikant anzusehen ist): Punktion nach sorgfältiger Desinfektion der Haut.

Im Falle, dass keine Uristat®-Röhrchen zur Verfügung stehen, sollten die Urinproben unbedingt innerhalb von 24 h gekühlt zum Labor gelangen (bei Kühlung ist die Keimzahl etwa bis zu 24 h stabil). Bei Verwendung von Eintauchnährböden bitte beachten:

	Nährboden vollständig mit Urin benetzen
	Es sollten keine Urinrückstände im Gefäß verbleiben
	Gefäß fest zuschrauben, um Austrocknen zu verhindern
	Verfallsdatum der Nährböden beachten

Harnröhren- Cervix-, Vaginal-Abstriche, Ejakulate

Abstrichtupfer sollten in Transportmedium, Ejakulate nativ in sterilen Röhrchen versandt werden. Für die Mykoplasmen- und Chlamydien-Diagnostik stehen spezielle Transportmedien zur Verfügung. Bei V. a. Gonorrhoe Abstrichtupfer in Amies-Medium mit Aktivkohle versenden.

Stuhlproben und andere Materialien bei bakteriellen Darmerkrankungen

Walnussgroße (ca. 5-8 ml) Faeces-Probe in einem Stuhlröhrchen einsenden (bitte Stuhl nur in das innere Röhrchen einfüllen). In Ausnahmefällen können auch Rektalabstriche eingeschickt werden.
Zur Erhöhung der Sensitivität sollten drei Stuhlproben von verschiedenen Tagen untersucht werden. Durchfallerreger sind am ehesten in den blutig-schleimigen Anteilen der Stuhlprobe nachzuweisen.

Außerdem können Duodenalsaft, Erbrochenes, seltener Blut und Knochenmarkpunktate geeignet sein (z. B. bei Typhusverdacht).

Darmparasiten

Erbsengroße Stuhlprobe zur Untersuchung auf Würmer und Wurmeier einsenden. Oxyureneier werden besser mit einem Tesafilmstreifen nachgewiesen, der morgens gegen die Analregion gedrückt und dann auf einen Objektträger geklebt zum Versand gelangt.

Zum mikroskopischen Nachweis von Amöben und Lamblien (vegetative Formen) sollte eine körperwarme Stuhlprobe direkt im Labor abgegeben werden. Zum Nachweis von Amöben- bzw. Lamblienzysten mittels ELISA genügt eine native Stuhlprobe.

Wichtig: In jedem Fall sollte zur Erhöhung der Ausbeute Material aus makroskopisch auffälligen Stuhlanteilen (z. B. blutige oder schleimige Bereiche) eingeschickt werden.

Tuberkulose-Diagnostik

Die Besonderheiten der Materialentnahme für die Mykobakteriendiagnostik sind in Tabelle 2 zusammengefasst.

Tabelle 2: Geeignete Materialien und Materialgewinnung bei Verdacht auf Tuberkulose oder andere Mykobakteriosen